蛋白質電泳

western blot

1、清洗板子,兩塊大膠(1.0 mm),兩塊薄板。用紗布倒少許洗潔精至海綿面,來回仔細搓洗,特別是大板兩邊凹/凸起部分,然後蒸餾水沖洗,薄板兩邊要仔細清洗。55 ℃烘箱30 min, 拿出後用無塵紙講殘餘液體吸乾。(板子下部邊緣出如果有破損,漏液的可能性比較大
2、挑選薄板平整面向下,在桌面上來回壓平,放在制膠器橡膠條上,夾緊
3、10%的分離膠配10 mL
按照配方比例。原料有:H2O,30%的Arcylamide (4℃結晶紫瓶子); 1.5M Tris-Hcl (pH 8.8); 10 SDS; 10% 的過硫酸銨(APS,4℃); TEMED(有毒); 每塊板子各加4~5 mL, 異丙醇或者乙醇液封。凝膠1 h。
4、濃縮膠 2 mL
倒掉乙醇,純水沖洗,不要對準膠衝,3 M濾紙吸乾,梳子用無塵紙吸乾水分高備用,按配方配濃縮膠,加入玻璃板,插上梳子,凝膠1h。
5、準備樣品,樣品pro處理100 ℃,10 min; 已處理好,又凍存的樣品100 ℃
6、配running buffer 1 mL,(100 mL 10× running buffer + 900 mL dH2O)上下顛倒混勻, 將玻璃板取出放在跑膠槽上,薄板朝向兩邊,夾緊,加入running buffer
點樣、70 v ,15 min 110 v 跑1.5~2 h (恆壓)
7、轉膜

  • a、轉膜buffer: 10 mL 10× Transfer buffer + 200 mL 甲醇 + 700 mL dH2O
  • b、將transfer buffer 倒入, 將夾子、NC膜放入Buffer中,左白右黑。
  • c、起膠,先用水衝一下,綠板起薄板,寧可慢一些,也不能把膠弄碎。若膠在大板上,直接正放;若在薄板上,則反着放在buffer中。
  • d、 在黑夾子上,一塊黑海綿上加一塊白海綿,再兩層濾紙,加膠,加NC膜,再濾紙,再白海綿,壓板。整個過程趕走氣泡,弄好後,膠在buffer中不能幹。
  • e、放入轉移槽中,夾子的黑色面對槽子的黑色面,放冰盒,加Buffer,整個放入盆子中,加冰,110 V, 90 min (恆壓)
  • f、轉膜結束後,dH2O 1~2 min, 倒掉水, 加入麗春紅染液,使Pro 顯色 5 min, 回收麗春紅, dH2O 洗滌1~2次。
  • g、剪膜,放入盛有dH2O的平皿中,放入搖牀水洗2 次,倒掉, 加入BSA(5 % BSA in PBST)封閉 1 h [大槽3 mL, 小槽 2 mL] (最低轉速)
  • h、加一抗 1~2 mL(對應合適濃度),4 ℃搖牀過夜。(最低轉速)
    加入麗春紅染一下,d H2O 加入,趁着有顏色趕緊截膜,在桌子加d H2O, 將膜保持溼潤,一般一個向線內截一張膜。
    轉膜時配:PBST (0.1 % Tween) 10 × PBS
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