甲基化測序 -- 重亞硫酸鹽法和TAPS兩種方法

DNA甲基化,即在不改變鹼基類型和DNA序列的前提下,在某些鹼基上加上甲基的過程。它屬於表觀遺傳學範疇,主要通過影響基因表達而改變生物體的性狀。基因甲基化的結果,一般是使甲基化位點下游的基因表達量減少。今天在這裏主要總結一下應用在測序中的甲基化檢測方法:重亞硫酸鹽法和TAP法。

1. 重亞硫酸鹽法

文章鏈接🔗 A genomic sequencing protocol that yields a positive display of 5-methylcytosine residues in individual DNA strands.

1.1 檢測原理

原理:重亞硫酸鹽能夠將C鹼基轉化成U鹼基,而甲基化修飾後的C鹼基不會和重亞硫酸鹽發生反應,能夠在重亞硫酸鹽處理中,一直保持C鹼基的狀態。因此在對測序數據的比對中,但凡檢測到的C鹼基均表明該位置的C爲甲基化修飾過的C。

1.2 兩種建庫方法

  • Illumina 公司的 Truseq DNA建庫方法 (先建庫,後轉化)
    也就是說,待檢測的DNA樣品首先要按照正常的建庫流程:打斷獲得DNA片段(200bp左右)--> DNA末端修復並加入ploy A尾 --> 加入接頭


Illumina Truseq DNA建庫試劑盒當中,它所提供的接頭都已經經過甲基化修飾了,因此可以保證接頭上的C還是保持C,不會被轉化成U,從而保證它可以和固定在flowcell上的DNA接頭互補雜交,通過發生橋式PCR反應、成簇進行測序。

這種方法最大的缺點:構建好的文庫使用重亞硫酸鹽處理時,90%以上的DNA鏈會斷掉(傷敵一千自損八百)。因此文庫的豐富度會損失90%以上,同時便要求樣品量足夠高。
這種方法的好處:建庫過程中用的PCR循環數較少,所以它PCR擴增效率不同,引起的文庫不均一程度較低,也就是PCR偏好性低。

  • EpiGnome 方法
    1.重亞硫酸鹽先處理DNA,把未甲基化的C都轉變成U
    。。。
    優點:把重亞硫酸鹽處理的過程放在了建庫前,這樣建成的庫的豐富程度會比較高。
    缺點:要做較多的PCR循環,這樣PCR產物的擴增均一性不是太好,PCR偏性較大。

Hiseq 2000 /2500 測甲基化文庫的問題和解決方案
對於Illumina的HiSeq2000或者2500平臺上進行測序,如果文庫是 鹼基平衡 的文庫(也就是A/C/G/T四種鹼基的比例各佔25%左右的文庫),測序儀對鹼基的判讀會比較好。
而甲基化的C畢竟佔比不高,這種將正常C轉化成U的方法無疑使最終上機的DNA文庫鹼基不平衡,這樣在使用Hiseq 2000 /2500測序儀來測甲基化文庫的過程中,文庫測序得到的數據質量就很差,並且經過過濾得到的有效數據質量也會較低。實際上機過程中,爲了彌補甲基化文庫的鹼基不平衡,通常會摻入大比例(一般爲30%)的基因組文庫、或者PhiX文庫,來補充較多的C鹼基。

  • 設置內參
    由於重亞硫酸鹽對未甲基化的C的轉化效率不是100%(一般99%左右),爲了對實驗的轉化效率進行控制。一般會在轉化實驗中加入1%內參對照品:λDNA(甲基化酶缺陷型的大腸桿菌所生產出來的完全沒有甲基化的DNA) 或 pUC19 DNA(質粒)來看轉化效率。(同樣可以通過用甲基化酶處理過的,CpG島完全被甲基化的DNA)來追蹤甲基化DNA對重亞硫酸鹽轉化的抵抗效果。

  • 數據分析(需要做兩次轉換)
    測序出來的序列在和基因組進行對比時,直接對比是比對不上的。
    -- 把 參考基因組 上所有的C都改成T,和測序序列進行對比
    -- 把 參考基因組 上所有的G都改成A,和測序序列進行對比

比對上之後,再尋找reads中的C鹼基,標記他們的座標,這些便是我們尋找的甲基化的C鹼基。

TAPS甲基化測序

TAPS 英文全稱 "TET-assisted pyridine borane sequencing",TET協助的吡啶硼烷測序。TET(ten-eleven translocation)指的是“10-11轉位酶”,TET酶能夠把甲基化的C鹼基轉化成羧基化的C鹼基。原理:接着在吡啶硼烷作用下把羧基化的C轉化成二氫尿嘧啶(也就是多兩個H原子的U鹼基),二氫尿嘧啶在PCR和測序過程當中,都會識別成T。
可以通過對比轉化前後哪些C鹼基被轉化成了T,就可以知道哪些C是被甲基化了的。
TAPS的假陰性率 2.7%-3.5%,假陽性率0.23%
優點:

  • TAPS方法對DNA的破壞很小,可以保持10KB以上的長鏈DNA。
  • 只要1ng的DNA量就能建庫,相比重亞硫酸氫鹽的方法少了一千倍(1ug DNA)
  • TAPS得到的DNA文庫複雜度高(僅把佔比很小的甲基化C進行了改變,對DNA的天然序列改變很小,鹼基平衡),對Illumina測序儀更加友好,數據質量較高,有效數據量增加
  • 可以使用通用的BWA序列比對方法完成序列比對工作(重亞硫酸鹽法得到的數據,因爲大量的C鹼基都被改成了T,所以要用特殊的軟件來分析,例如Bismark軟件)
    文章🔗 Bisulfite-free direct detection of 5-methylcytosine and 5-hydroxymethylcytosine at base resolution
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